|
Государственное
санитарно-эпидемиологическое нормирование Государственные санитарно-эпидемиологические 4.2. МЕТОДЫ
КОНТРОЛЯ. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ Метод микробиологического измерения Методические
указания МУК 4.2.1782-03 МИНЗДРАВ РОССИИ МОСКВА 2004 Методические указания. - М.:
Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004. 1. Разработаны: Российским государственным медицинским университетом
(к.б.н. Н.И. Шеиной). 2. Утверждены Первым заместителем министра здравоохранения Российской Федерации
- Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 24 октября
2003 г. 3. Введены в действие с 1 декабря 2003 г. 4. Введены впервые. Главный государственный
санитарный врач Российской Федерации, Первый заместитель Министра здравоохранения Российской Федерации Г.Г. Онищенко 24 октября 2003 г. Дата введения: 1 декабря
2003 г. 4.2. МЕТОДЫ
КОНТРОЛЯ. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ Метод микробиологического измерения концентрации клеток микроорганизма Candida tropicalis Y-456 - продуцента ксилита в воздухе рабочей зоны Методические
указания
МУК 4.2.1782-03
1. Общие положения и область применения
Настоящие методические
указания устанавливают методику проведения микробиологического количественного анализа
концентрации клеток штамма Candida tropicalis Y-456 - продуцента ксилита в
воздухе рабочей зоны в диапазоне концентраций от 10 до 3000 клеток в 1 м3
воздуха. Методические указания
разработаны в соответствии с требованиями ГОСТ
12.1.005-88 «ССБТ. Воздух рабочей зоны. Общие санитарно-гигиенические
требования» и ГОСТ
Р 8.563-96 «Методики выполнения измерений». Методические указания
предназначены для применения в лабораториях предприятий, организаций и
учреждений, аккредитованных в установленном порядке на право проведения
микробиологических исследований. Методические указания
одобрены и рекомендованы секцией «Гигиенические аспекты биотехнологии и
микробного загрязнения окружающей среды» Проблемной комиссии «Научные основы
гигиены окружающей среды». 2. Биологическая характеристика Candida tropicalis Y-456 и его гигиенический
норматив
На сусло-агаре на 2 - 3
сутки штамм образует круглые кремоватые колонии с ровным краем, средний диаметр
изолированных колоний составляет 0,3 см, а максимальный - 0,8 см. В центре
колоний образуется небольшое возвышение - «бугорок», на среде появляется
маленькое желто-оранжевое окрашивание. Консистенция колоний мягкая, неплотная,
вязкая. Поверхность гладкая, слегка матовая. Морфологически штамм
представлен полиморфными клетками: округлые, овальные, большей частью одиночные
2 - 4 мкм, иногда цепочки или конгломераты из вытянутых клеток 10 - 12 мкм.
Наблюдается обилие бластоспор. При выращивании на
кукурузном агаре по Дальмау в чашках Петри обильно образуются с многократными
разветвлениями и бластоконидиями, расположенными одиночно или цепочками вдоль
гиф (7). Систематическое положение
микроорганизма. Класс Fungi
imperfecti Порядок Blastomycetales Род Candida Вид tropicalis Штамм Y-456 Штамм получен из ЦМПМ
ВНИИгенетика как продуцент этанола и селектирован по признаку формирования крупных
колоний на средах с ксилозой. Штамм является продуцентом ксилита.
Продуктивность на средах с 5 % содержанием ксилозы: максимальная - 80 %
ксилита, средняя - 78,8 - 76,2 % (39,5 г/л) ксилита. Штамм-продуцент растет на
жидких и агаризованных средах. Оптимальная температура роста 35 - 37 °С, рН
среды - 5,0 - 6,0. Для размножения используется сусло-агар 5 - 6 °Б, среда ДАП
- глюкоза (ксилоза) - 20 г, дрожжевой экстракт - 2,0 г, пептон - 2 г, агар-агар
- 20 г, вода - 1 л, рН среды - 5,0 - 6,0. Предельно допустимая
концентрация (ПДК) в воздухе рабочей зоны - 300 кл./м3, пометка А. 3. Пределы измерений
Методика обеспечивает
выполнение измерений количества клеток плесневого гриба в воздухе рабочей зоны
в диапазоне концентраций от 10 до 3000 клеток в 1 м3 воздуха при
доверительной вероятности 0,95. 4. Метод измерений
Метод
основан на аспирации из воздуха клеток плесневого гриба на поверхность среды
сусло-агар и подсчета выросших колоний по типичным культурально-морфологическим
признакам на 2 сутки. В качестве дополнительного контроля предлагается отбор пробы на чашку Петри с
селективной средой для дифференцирования С. tropicalis от других дрожжеподобных грибов, обладающих способностью к образованию
ростковых трубок (8, 9). 5. Средства измерений, вспомогательные устройства, реактивы и
материалы
При выполнении измерений
применяют следующие средства измерений, вспомогательные устройства и материалы. 5.1. Средства измерений, вспомогательные
устройства, материалы
Прибор для
бактериологического анализа воздуха,
модель 818 (щелевой прибор Кротова) ТУ
64-12791-77 Термостаты электрические
суховоздушные или водяные Автоклав
электрический ГОСТ
9586-75 Бокс, оборудованный
бактерицидными лампами Холодильник бытовой Весы лабораторные,
аналитические типа ВЛА-200 Микроскоп биологический с
иммерсионной системой типа «Биолам» Л-211 Лупа с
увеличением ´ 10 ГОСТ
25706-83 Чашки Петри
бактериологические плоскодонные, стеклянные, диаметром
100 мм Пробирки биологические,
вместимостью 20 и 35 мл ГОСТ
10515-75 Пипетки
мерные на 1, 5 и 10 мл ГОСТ
10515-75 Пипетки
мерные на 1, 5 и 10 мл ГОСТ
1770-74 Колбы
конические, вместимостью 250 и 500 мл ГОСТ
1770-74 Секундомер ГОСТ
9586-75 Барометр ГОСТ
24696-79 Марля
медицинская ГОСТ 9412-77 Вата медицинская
гигроскопическая ГОСТ
25556-81 5.2. Реактивы, растворы
Среда сусло-агар: солодовое
сусло (значение Баллинга от 5 до 6°) - 98 %,
агар-агар - 2 %, рН среды 5,0 - 6,0, режим
стерилизации 1,1 - 1,2 ати, 40 мин Спирт
этиловый ректификат ГОСТ
5962-67 Антибиотик биомицин
(хлортетрациклина гидрохлорид) Сыворотка или плазма крови
человека (вместо них можно
использовать среду 199) 6. Требования безопасности
При выполнении измерений
концентрации клеток штамма-продуцента в воздухе рабочей зоны соблюдают
следующие требования. 6.1. Правила техники безопасности при работе с химическими реактивами по ГОСТ 12.1.005-88. 6.2. Электробезопасность при работе с электроустановками по ГОСТ 12.1.019-79 и инструкции по эксплуатации прибора. 6.3. Руководство «Положение об организации работы по технике безопасности
в микробиологической промышленности» (1980), «Инструкции по устройству,
требованиям безопасности и личной гигиены при работе в микробиологических
лабораториях предприятий микробиологической промышленности» (1977). 6.4. Все виды работ с реактивами проводят только в вытяжном шкафу при
работающей вентиляции, работа с биологическим материалом осуществляется в
боксе, оборудованном бактерицидными лампами. 7. Требования к квалификации операторов
К выполнению измерений и
обработке их результатов допускают лиц с высшим или средним специальным
образованием, прошедших соответствующую подготовку и имеющих навыки работы в
области микробиологических исследований. 8. Условия измерений
Процессы приготовления
растворов и подготовки проб к анализу проводят в нормальных условиях при
температуре воздуха (20 ± 5 °С), атмосферном давлении 630 - 800 мм рт.ст. и
влажности воздуха не более 80 %. 9. Проведение измерения
9.1. Условия отбора проб воздуха
Для определения концентрации
клеток плесневого гриба воздух аспирируют при помощи аппарата Кротова со
скоростью 10 л/мин на поверхность среды сусло-агар. Время аспирации воздуха (1
- 10 мин) зависит от предполагаемой концентрации клеток штамма-продуцента. Аппарат Кротова перед каждым
отбором пробы воздуха тщательно протирают спиртом. Особенно тщательно
обрабатывают поверхность подвижного диска и внутреннюю стенку прибора; наружную
и внутреннюю стенку крышки. На подвижной диск устанавливают подготовленную
чашку Петри со средой, одновременно снимая с нее крышку. Прибор закрывают.
Соприкосновение крышки прибора со средой недопустимо. После отбора пробы
воздуха и остановки диска, прибор открывают, быстро снимают чашку Петри и
закрывают крышкой от данной чашки. На дне чашки Петри стеклографом отмечают
точку контроля, время аспирации и дату отбора пробы. 9.2. Выполнение анализа
Метод предполагает учет количества
типичных колоний, выросших на 2 сутки после посева проб воздуха по
культурально-морфологическим признакам. Метод позволяет учитывать на чашке до
200 колоний продуцента. Агаризованную среду
сусло-агар расплавляют, остужают до 50 - 60 °С, добавляют антибиотик биомицин
из расчета 100 мг/л (для подавления посторонней бактериальной микрофлоры),
тщательно перемешивают и разливают по 10 мл в стеклянные чашки Петри на
горизонтальной поверхности. Чашки с застывшей средой
помещают в термостат на сутки при температуре 37 °С, после чего
проросшие чашки бракуют, стерильные чашки используют для контроля воздуха. После отбора проб воздуха
чашки Петри помещают в термостат при температуре 37 °С. Через 2
суток производят подсчет выросших типичных колоний продуцента. При
необходимости культуру подвергают микроскопированию. Для
постановки дополнительного контроля в
среду добавляют сыворотку или плазму крови человека (можно также заменить
средой 199) из расчета 0,5 мл
сыворотки на 5 мл среды. После отбора проб инкубируют при 37 °С в
течение 3 часов. При микроскопировании некоторые дрожжеподобные грибы (С. albicans) в отличие от С. tropicalis на селективной среде
образуют ростковые трубки диаметром 3 - 4 мкм и длиной до 20 мкм (они сходны с
мицелием, но не дают сужения в месте прикрепления к дрожжевой клетке). 10. Вычисление результатов измерения
Расчет концентрации клеток
продуцента в пересчете на 1 м3 воздуха производят по формуле: кл./м3, где Х - концентрация клеток
продуцента в воздухе; N - количество колоний
продуцента, выросших на чашке; 1000 - коэффициент пересчета на 1 м3 воздуха; V - объем воздуха, л
(произведение скорости на время аспирации). 11. Оформление результатов измерений
Результаты измерений
оформляют протоколом по форме. Протокол №
Результаты микробиологического
анализа
Ответственный исполнитель Научный руководитель Список литературы
1. ГОСТ 12.1.005-88 «ССБТ. Воздух рабочей зоны. Общие санитарно-гигиенические требования». 2. ГОСТ 8.563-96. ГСИ «Методики выполнения
измерений». 3. Положение об организации работы по технике безопасности в
микробиологической промышленности. - М., 1980. 27 с. 4. Инструкции по устройству, требованиям безопасности и личной гигиены
при работе в микробиологических лабораториях предприятий микробиологической
промышленности. - М., 1977. 7 с. 5. Влодавец В.В., Немыря В.И. Санитарно-микологический контроль объектов
окружающей среды на предприятиях микробиологической промышленности // Гиг. и
сан., 1977. № 1. С. 25 - 28. 6. Бабьева И.П., Зенова Г.М. Биология почв. - М.: МГУ. С. 332. 7. Саттон Д., Фотергилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и
условно патогенных грибов. - М.: Мир, 2001. 110 с. 8. Кашкин П.Н., Лисин В.В. Практическое руководство по медицинской
микологии. - М.: Медицина, 1983. 153 с. 9. Kwon-Chung K.J., Bennett J.E. Medical mycology. Philadelphia: Lea
& Febiger, 1992. P. 61 - 62. СОДЕРЖАНИЕ |
|